- Электрофорез
- Диагностика Необластом(ОПУХОЛЕЙ)
- Воспитание щенков и котят
- Кормление собак и кошек
- Чтобы не болеть
- Уход за зубами
- Уход за кожей и шерстью
- Блохи у кошек и собак
- Болезни морских свинок
- Болезни кроликов
- Состояние зубов
- Стрижка животных
- Удаление когтей
- Укус клеща у собак
- Переломы у собак, кошек
- Роды кошки и собаки
- Вопросы и Ответы
- Статьи
- Карта сайта
- covid19
- Исследования опухоли крысы(Роберта)
ДИАГНОСТИКА НЕОБЛАСТОМ (ОПУХОЛЕЙ) В
Центре охраны здоровья мелких домашних животных доктора А,М,Бугаева
Адрес Центра: г. Киев, ул. Иорданская 6(Оболонь).
Тел.426 - 47 - 76; 426 -47 - 78. Моб. 067 - 787 - 06 - 91.
Адрес Новой почты Иорданская 1, п/о 49.
Основная особенность цитологических и патогистологических исследований в Центре охраны здоровья мелких домашних животных заключается в том, что все исследования мы проводим в нашем центре на собственном оборудовании и высокоразрешающей светооптической оптике. Для исключения диагностических ошибок мы имеем договора с рядом медицинских патоморфологических лабораторий г. Киева. Это позволяет обеспечить коллегиальную диагностику каждого сложного случая. Согласно внутренней статистике нашего центра каждый случай Необластом, в 100% случаев гарантирован правильным диагнозом.
Главный эксперт – А.М. Бугаев Директор Центра охраны здоровья животных г. Киев.
А.М.Бугаев, директор Центра охраны здоровья мелких домашних животных. Доктор ветеринарной медицины. Специализация ветеринарная патоморфология и ихтиопатология. Двадцать шесть лет преподавал ветеринарную патанатомию сельскохозяйственных животных в Алма-Атинском, ордена Трудового Красного знамени Зооветеринарном институте. Три года читал лекции студентам по патоморфологии сельскохозяйственных животных и вёл курсы, повышения квалификации ветеринарных врачей Республики Куба в Гаванском Университете Сельскохозяйственных наук. Затем 12 лет заведовал Лабораторией болезней рыб при КАЗ.НИИРХе (Алма - Аты). С 1989 года директор Центра охраны здоровья мелких домашних животных в г. Киеве.Подробнее...
Общие сведения о диагностической лаборатории.
В Центре охраны здоровья животных многие годы проводятся цитологические исследования различных биоматериалов - кожи при грибковых поражениях, крови, мочи, соскобов с ран и выделений со свищей, а также отпечатки с эрозированных поверхностей кожи и язв, пунктаты из суставных и серозных полостей при различных заболеваниях. Почему важны такие цитологические исследования? Исследование соскобов поражённых участков кожи очень важны при диагностике, например, демодекозе собак и кошек, а так же грибковых дерматитах.
В нашей клинике важное значение придаётся цитологическому исследованию мазков крови при бабезиозе (пироплазмозе) собак – собачей малярии. Как при малярии человека, так и при бабезиозе собак, отсутствие осознанного правильного лечения, как правило, приводит к смерти животных. Поэтому очень важно при диагностике бабезиоза проведение цитологического исследование и обнаружение паразитов в эритроцитах заболевшего животного. Только демонстрация паразитов в эритроцитах даёт право на 100% диагноз и назначение эффективного лечения этого смертельно опасного заболевания. Однако, чтобы обнаружить паразитов в крови собаки или кошки необходимо не только приготовить качественные препараты, необходима качественная оптика и самое главное нужны квалифицированные специалисты. В ветеринарной клинике нашего Центра все составляющие для постановки диагноза и назначения научно – обоснованного лечения имеются (фото 1- 3).
Фото 1. Цитологический препарат из уха собаки. Показаны разные стадии развития и размножения B.canis (стрелки) в эритроцитах периферической крови собаки заразившейся бабезиями в естественных условиях. г. Вышгород, Киевская область, март 2015 год.
Фото 2. Цитологический препарат из периферической крови. Показаны восемь трофозоитов, имеющих грушевидную форму, которые свободно располагаются в эритроците.
Фото 3. Мазок крови щенка. Естественное заражение бабезиозом(Babesia canis). Обнаружены грушевидные паразиты в эритроците. (Архив Центра охраны здоровья животных доктора А.М.Бугаева, г. Киев).
Цитологические исследования имеют важное значение и при дирофиляриозе собак, широко распространенном в Украине, особенно, в Киеве и Киевской области. Обнаружение микрофилярий в периферической крови собаки даёт основание поставить точный диагноз (фото 2) и видео.
Фото 4. Цитологический препарат. Показана микрофилярия в мазке – отпечатке опухоли (ангеосаркоме) собаки. Окраска гематоксилин – эозином.Ув. Об.40 х ок.10.
Несмотря на важность проведения цитологических исследований при различных заболеваниях мелких домашних животных, в этом сообщении, в дальнейшем речь пойдёт только о материалах, получаемых во время удаления оперативным путём доброкачественных и злокачественных опухолей, а так же при диагностической лапаротомии при подозрениях на онкологию.
Почему необходимы цитологические и патогистологические исследования при опухолях собак и кошек?
Дело в том, что в последние годы, уважающие себя практикующие ветеринарные хирурги, всё чаще сталкиваются с необходимостью квалифицированного цитологического и патогистологического исследования удалённых опухолей и биопсийного материала при лейкозах и лимфосаркоматозах собак и кошек. Поскольку лишь детальная цитологическая и патогистологическая характеристика удалённой опухоли, может дать, возможность более обосновано выбрать метод послеоперационного лечения. Большое значение цитологические исследования опухолей имеют при исследовании биопсийного материала перед операцией. Результаты цитологического исследования перед операцией дают возможность хирургу научно – обосновано принимать решение по удалению не только опухолей, но и окружающих их тканей.
Для опухолей характерным является метастазирование и рецидивирование. Поэтому не секрет, что даже при уникально проведённой операции, опухоль может появиться вновь на месте удалённого новообразования (рецидив), или в каком –то другом месте (метастаз). Поэтому, мы всегда советуем владельцам животных, когда подтверждается патогистологически и цитологически высокая агрессивность роста опухоли, провести пятидневный курс противоопухолевой (реабилитационной) терапии их питомцам. Такой курс, профилактической терапии разработан в нашей клинике. Как показывает практика, он значительно уменьшает риск рецидивов опухолей и быстрее устраняет последствия перенесённой болезни.
Не меньшее значение цитологические исследования имеют при лейкозах и лимфосаркоматозах собак и кошек. Поскольку точный цитологический диагноз позволяет правильно определить степень поражения лимфатических узлов у животного и предсказать прогноз течения заболевания. И самое главное, определить целесообразность лечения животных при лейкозах и лимфосаркоматозах.
Вот один из наглядных примеров:
В ветеринарную клинику Центра охраны здоровья животных в сентябре 2019 года поступил кот в возрасте 12 лет, которого лечили в нескольких клиниках г. Киева от общего истощения. Хозяйка за месяц лечения, заплатила в общей сложности 7000(семь тысяч) гривен.
Действительно, клинические исследования показали сильную степень истощения животного. Но при цитологическом исследовании мазков крови кота было выявлено большое количество незрелых лейкоцитов, а также выраженные признаки анемии, что вызвало подозрение на лейкоз у животного (фото 1).
Фото 1. Цитологический препарат. Показано увеличенное количество незрелых нейтрофилов в периферической крови кота, а также большое количество эритроцитов с морфологическими признаками анемии. Увеличение микроскопа в 1000 раз.
С согласия хозяйки кота, была проведена диагностическая лапаротомия. В результате было обнаружено системное поражение брыжеечных лимфатических узлов, пейеровых бляшек тонкого отдела кишечника и солитарных фолликулов толстого кишечника(Фото 2).
Фото 2. Показаны резко увеличенные брыжеечные лимфатические узлы толстого отдела кишечника(чёрные стрелки) и солитарных фолликул толстого отдела кишечника(красные стрелки).
На основании клинического, цитологического исследования и диагностической лапаротомии был поставлен диагноз - Лейкимический лейкоз.
После беседы с хозяйкой, кот был усыплён, поскольку лечение такой формы лейкоза не представляло никакой целесообразности.
При вскрытии кота, правильность решения эвтаназии животного полностью подтвердилась.
Цитологическое и патогистологическое исследование опухолей и биопсийного материала - это сложная процедура, как в плане подготовки взятого патматериала для исследования, так и в его интерпретации (разъяснения). Цитологические и патогистологические исследования требует хороших знаний, как в области физиологии, анатомии и гистологии, так и патофизиологии, патоморфологии, и патогистологиии. Поэтому, высоко квалифицированный цитолог и патогистолог, в первую очередь, должен быть квалифицированным патоморфологом.
Учитывая важную роль цитологических и гистологических исследований при диагностике опухолей, мы в Центре охраны здоровья животных, многие годы проводим подобные исследования не только послеоперационного патматериала получаемого в нашей клинике, но и из других ветеринарных клиник города Киева, областных центров Украины. К сожалению, нередко врачи для гистологического исследования неправильно делают забор патматериала и не соблюдают правила его фиксации. Для того, чтобы патологический материал был квалифицированно обследован его необходимо правильно взять и доставить в ветеринарную клинику нашего ЦЕНТРА.
ПРАВИЛА ОТБОРА ПАТМАТЕРИАЛА И ЕГО ФИКСАЦИЯ.
ДЛЯ ГИСТОЛОГИЧЕСКОГО ИССЛЕДОВАНИЯ.
1. Для гистологического исследования необходимо вырезать острым скальпелем или бритвой небольшой кусочек, наиболее демонстративного участка опухоли, размером - площадью не больше 3-4 квадратных сантиметров и толщиной 2см. Не надо присылать нам всю опухоль, да ещё, если она весит 1-2 кг.
2. Взятый патматериал (из опухоли), необходимо как можно быстрее зафиксировать, поместив его в фиксирующею жидкость.
2.1. Лучшей фиксирующей жидкостью для диагностического гистологического исследования является 10% раствор формалина.
2.2. Для приготовления 10 % рабочего раствора формалина необходимо взять 40% раствор продаваемого ФОРМАЛЬДЕГИДА за 100% и из него приготовить 10% рабочий раствор.
2.3. ПРИМЕР. Для приготовления 100 мл. рабочего раствора формалина, необходимо взять 90 мл. водопроводной воды и добавить в него 10 мл. 40% раствора формальдегида. Соответственно, если необходимо приготовить 1 литр рабочего раствора необходимо взять 900 мл. водопроводной воды и 100 мл 40% раствора формальдигида. Такой 10% рабочий раствор формалина хранится годами в пластмассовой или стеклянной посуде и может быть использован при необходимости в любое удобное время.
2.4. Взятый патматериал (кусочек опухоли около 30 - 40 грамм массы) необходимо поместить в стеклянную или пластмассовую посуду и залить приготовленным рабочим раствором формалина.
ПРИМЕЧАНИЕ.
1. Объём раствора формалина должен в три или четыре раза превышать объём фиксируемого материала. Желательно через сутки слить формалин и заменить его на новый раствор 10% формалина. Поскольку первая порция формалина всегда будет содержать значительное количество крови, что не желательно для дальнейшего исследования. После фиксации патматериал сохраняется годами, и может быть отослан в наш Центр в любое удобное время.
2. В тех случаях, когда нет возможности зафиксировать патматериал в 10 процентном формалине, его можно зафиксировать в 50% спирте( но ни в коем случае не в 96% спирте). В крайнем случае (это не лучший вариант) патматериал можно зафиксировать в 35 - 40% водке. Только, в таком случае, кусочки опухоли должны быть не больше: площадью 2-3 квадратных см. и толщиной 1,0 - 1,5 см.
Материал взятый для диагностического исследования вы можете отправить в наш Центр, или с оказией, или по новой почте. Предварительно необходимо хорошо упаковывать, чтобы не вытекла фиксирующая жидкость. Желательно пересылать патматериал в пластмассовой таре.
Адрес нашей Новой почты: г.Киев, п/о 49.
Швец Надежде Максимовне. Тел. 067 -787-06 -91.
3. Заключение по результатам гистологического исследования будет готово через 7-8 суток со дня получения патматериала. В связи со сложной процедурой технического приготовления патматериала к исследованию, возможны небольшие отклонения по времени написания заключения.
ПРАВИЛА ОТБОРА ПАТМАТЕРИАЛА ДЛЯ ЦИТОЛОГИЧЕСКОГО.
ИССЛЕДОВАНИЯ.
Для цитологического исследования необходим свежий патматериал - это участок опухоли после хирургического удаления или материал после биопсии. Если опухоль большая, то нет необходимости доставлять в наш Центр всю опухоль. Достаточно взять только небольшую демонстративную часть опухоли.
ПРИМЕЧАНИЕ.
Для цитологического исследования фиксировать патматериал недопустимо. Желательно его в течение 3 - 4 часов после операции доставить в ветеринарную клинику в свежем виде. Предварительно покрыв посылаемый материал хорошо смоченной в физрастворе марлевой салфеткой.
В случае, если нет возможности доставить материал в лабораторию в течение 3 -4 часов, его можно прикрыть салфеткой смоченной физраствором, поместить в холодильник (только не в морозильную камеру) и по возможности в течение суток доставить в наш Центр.
Заключение по результатам цитологического исследования будет готово через 5 суток со дня получения патматериала.
ПРИМЕРЫ ЦИТОЛОГИЧЕСКОГО И ПАТОГИСТОЛОГИЧЕСКОГО.
ЗАКЛЮЧЕНИЯ.
Примечание. Клички животных, адреса хозяев и их фамилии в приводимых примерах не будут упоминаться.
ЦЕНТР ОХРАНЫ ЗДОРОВЬЯ ЖИВОТНЫХ
ДОКТОРА А. М. БУГАЕВА.
г. Киев, Иорданская, 6; тел. 426 – 47 – 78.
ЗАКЛЮЧЕНИЕ О ПАТОГИСТОЛОГИЧЕСКОМ И ЦИТОЛОГИЧЕСКОМ ИССЛЕДОВАНИИ ОПУХОЛИ КОШКИ.
В ветеринарную клинику Центра охраны здоровья животных доктора А. М. Бугаева 8 сентября 2019 года поступила кошка в возраст 14 лет, с новообразованием в области первого пакета молочной железы. Со слов владельца кошки установлено, что 16 месяцев назад, в одной из ветеринарных клиник г. Киева, у животного была удалена опухоль. Поскольку ни цитологических, ни патогистологических исследований удалённой опухоли не проводилось, природа опухолевого образования была неизвестна.
Макроскопическое описание опухоли.
При клиническом осмотре кошки, в области левого первого пакета молочной железы обнаружено новообразование, имеющее вид узла, уплотнённой консистенции, около 2 см. в диаметре. При разрезе кожи, опухоль имела ярко красный цвет (фото 1).
Фото 1. Общий вид опухоли до операции. Показана опухоль при надрезе кожи.
Удалённая опухоль представляла собой конгломерат ткани, окрашенный однородно в розовый цвет. Поверхность опухоли была бугриста и пронизана белесоватыми тяжами (фото 2).
Фото 2. Показан общий вид опухоли на разрезе. Хорошо видно, что поверхность опухоли бугриста и равномерно окрашена в розовый цвет.
Патогистологическое и цитологическое исследование.
При гистологическом исследовании хорошо видно, что опухоль состоит из железистых структур, пронизанных пучками грубо-волокнистой соединительной ткани (фото 3).
Фото 3. Гистологический препарат. Показаны солидно–железистые структуры опухоли (чёрные стрелки), пронизанные соединительной тканью (красные стрелки). Окраска гематоксилин – эозином. Увеличен в 40 раз Об.4 х ок.10.
На гистологических препаратах хорошо можно видеть, что опухоль обладает инфильтративным ростом (фото 4).
Фото 4. Гистологический препарат. Показан инфильтративный рост опухоли (стрелки). Окраска гематоксилин – эозином. Увелич. в 40 раз. Об.4 х ок.10.
При средних увеличениях микроскопа видно, что опухолевая ткань не однородна. Она большей частью состоит из тубулярных структур, между которыми видны сплошные клеточные поля (фото 5).
Фото 5. Гистологический препарат. Показаны тубулярные структуры из мономорфного эпителия (черные стрелки) и солидно-альвеолярные структуры (красная стрелка). Окраска гематоксилин – эозином. Увеличен в 400 раз.Об.40 х ок.10.
Изучая препараты под большим увеличением микроскопа, можно было отметить, что солитарные комплексы образованы довольно мономорфными клетками с гиперхромными ядрами. Митозы при этом редки (фото 6).
Фото 6. Гистологический срез. Показано поле с опухолевыми клетками без тубулярных структур (стрелки). Окраска гематоксилин – эозином. Увеличен в 1000 раз. Об.100 х ок.10.
Сплошные поля опухолевых клеток более демонстративно были видны на цитологических препаратах (фото 7). Такой рост опухоли свидетельствует о карциноме второго типа, т.е. довольно злокачественном росте опухоли.
Фото 7. Цитологический препарат. Показаны сплошные клеточные поля, окружённые волокнистой тканью (стрелки). Окраска гематоксилин – эозином. Увеличу в 400 раз. Об.40 х ок.10.
На периферии солидарных образований хорошо виден инфильтративный рост опухоли (фото 8).
Фото 8. Цитологический препарат. Показан инфильтративный рост опухоли в участках, имеющих сплошные опухолевые поля (стрелка). Окраска гематоксилин – эозином. Увеличен в 1000 раз. Об.100 х ок.10.
Цитологическое исследование опухоли, также показало, что, несмотря на умеренный полиморфизм опухолевых клеток, встречаются клетки с гипертрофированными ядрами. В некоторых из них можно видеть до 15-ти ядрышек, что свидетельствует об агрессивности данной опухоли (фото 9 -10).
Фото 9. Цитологический препарат. Показаны опухолевые клетки, имеющие разные размеры, форму и размеры ядер. Во многих ядрах обнаруживается от 2-х до 5-ти ядрышек (стрелки). Окраска гематоксилин – эозином. Увеличен в 1000 раз. Об.100 х ок.10.
Фото 10. Цитологический препарат. Показана гигантская опухолевая клетка, в гипертрофированном ядре которой можно видеть до 15-ти ядрышек (стрелка). Окраска гематоксилин – эозином. Увеличен в 1000 раз. Об.100 х ок.10.
ЗАКЛЮЧЕНИЕ.
Новообразование, расположенное в области левого первого пакета молочной железы кошки является рецидивом удалённой опухоли и представляет собой ИНФИЛЬТРИРУЮЩИЙ РАК ВТОРОГО ТИПА.
Примечание:
Инфильтрирующий (инвазионный) рак – это злокачественная опухоль. В данном случае опухоль образовалась на месте удалённого новообразования (рецидив). Подобные опухоли берут своё начало из эпителия альвеол молочных желез. Этиология этих опухолей у кошек окончательно не установлена. Они могут образовываться, как в одной молочной железе, так и в железах других пакетов. Кроме того, данная опухоль может давать ближние и отдалённые метастазы, поскольку распространяется, как по лимфатическим, так и кровеносным сосудам. Чаще у кошек наблюдаются лимфогенные метастазы в регионарные лимфатические узлы – подмышечные и передние грудные. После удаления опухоли молочной железы рецидивы у животного могут возникать в течение 2 – 3 лет. Поэтому, чтобы снизить риск последующих рецидивов у оперированного животного, мы всегда рекомендуем хозяевам животных, чтобы устранить последствия перенесённой болезни и избежать рецидива опухоли, провели своему питомцу курс реабилитационного лечения. Такой курс разработан в ветеринарной клинике нашего Центра.
ПРИМЕР ВТОРОЙ.
ЗАКЛЮЧЕНИЕ О ПАТОГИСТОЛОГИЧЕСКОМ ИССЛЕДОВАНИИ ОПУХОЛИ КОШКИ.
В ветеринарную клинику Центра охраны здоровья животных 27.08. 2019г. был доставлен патматериал от кошки, хозяева которой проживают в Одесской области (Украина) возраст животного 11лет. Хозяева кошки переслали патматериал в Центр охраны здоровья животных с оказией. Патматериал был зафиксированный в 96 % спирте.
ПРИМЕЧАНИЕ. Фиксировать патматериал в 96% спирте не желательно, поскольку спирт такой концентрации негативно влияет на структуру тканей опухоли, что затрудняет техническую и диагностическую работу. Ещё раз подчёркиваем, лучше фиксировать патматериал в 10 % растворе формалина. Если формалина нет, то можно и в спирте, но только в 40 или 50 % растворе. В крайнем случае, в 40 % водке.
МАКРОСКОПИЧЕСКОЕ ИССЛЕДОВАНИЕ ОПУХОЛИ.
Фото 1. Общий вид полученной опухоли. Хорошо видно, что опухолевые узлы располагаются в подкожной соединительной ткани и в дерме (стрелки).
При визуальном осмотре патматериала, хорошо было видно, что опухоль располагается в соединительной ткани дермы и подкожной клетчатке. Опухоль хотя и росла в виде узлов, однако чётких границ между опухолью и нормальной соединительной тканью не всегда просматривается (фото 1). На разрезе опухоли хорошо виден её инфильтративный рост. При этом, чётко просматривается хорошо сохранённый, немного утолщенный, эпидермис (фото 2).
Фото 2. Общий вид на разрезе опухолевого разрастания. На фотоснимке хорошо видно, что границы опухолевого роста стёрты, опухоль поразила подкожную соединительную ткань и дерму (чёрные стрелки). Красной стрелкой показаны ближние метастазы в дерме. Зелёной стрелкой показан утолщённый, но хорошо сохранившийся ещё эпидермис.
Поскольку патматериал был зафиксированный в спирте, то цитологическое исследование его не проводилось. Для цитологического исследования необходим свежий патматериал.
ДАННЫЕ ПАТОГИСТОЛОГИЧЕСКОГО ИССЛЕДОВАНИЯ.
Для патогистологического исследования, патматериал был проведён через батарею спиртов и залит в парафин. На специальном приборе, который называется микротом, из опухоли готовились гистологические срезы толщиной 4-5 микрон (это 1/1000 часть миллиметра). Приготовленные срезы были окрашены гематоксилин – эозином и изучались под микроскопом при увеличениях от 40 до 1000 раз.
При микроскопическом исследовании опухолевого узла хорошо видно обилие клеток типа фибробластов расположенных в нежной атипично расположенной соединительнотканной основе (фото 3).
Фото 3. Гистологический срез опухоли. На препарате хорошо виден структурный атипизм опухолевой ткани. Увеличен микроскопа в 40 раз (об.4х ок.10).
При большем увеличении микроскопа хорошо прослеживается и клеточный атипизм опухоли. Он проявляется тем, что опухолевые клетки морфологически сходны с нормальными фибробластами, однако размеры их увеличены и во многих их ядрах можно было видеть до 4 ядрышек. Наличие увеличенного числа нуклеол свидетельствует об усиленном метаболизме опухолевых клеток (фото 4).
Фото 4. Гистологический срез центральной части опухоли. Показан клеточный атипизм опухолевых клеток (чёрная стрелка). И нежная соединительная ткань (красная стрелка). Увеличен микроскопа в 1000 раз (Об.100 х ок.10).
В некоторых местах строма опухоли была инфильтрирована значительным количеством лимфоцитов (фото 5).
Фото 5. Гистологический срез. Показан участок стромы опухоли инфильтрированной лимфоцитами (стрелки). Красной стрелкой показана строма опухоли, состоящая из нежной соединительной ткани.
ЗАКЛЮЧЕНИЕ: На основании визуального и патогистологического исследования присланного патматериала, можно сделать вывод, что опухоль представляет собой злокачественное новообразование, развившиеся из соединительной ткани дермы и может быть квалифицирована, как КЛЕТОЧНО -ВОЛОКНИСТАЯ ФИБРОСАРКОМА.
ПРИМЕЧАНИЕ.
ФИБРОСАРКОМА - это злокачественная опухоль из волокнистой соединительной ткани, в данном случае из соединительной ткани дермы. Этиология фибросарком у кошек окончательно ещё не выяснена. Известно, что такие опухоли могут появляться только в одном месте или сразу в нескольких участках кожи, поскольку, как правило, фибросаркомы метастазируют гематогенным путём.
По дальнейшему уходу и лечению кошки необходимо консультироваться с Вашим лечащим врачом.
ЦЕНТР ОХРАНЫ ЗДОРОВЬЯ ЖИВОТНЫХ
ДОКТОРА А. М. БУГАЕВА
г. Киев, ул. Иорданская, 6; тел. 426 – 47 – 78.
ЦИТОЛОГИЧЕСКОЕ ЗАКЛЮЧЕНИЕ ПО ОПУХОЛИ СОБАКИ.
В ветеринарную клинику Центра охраны здоровья животных доктора А. М. Бугаева 1 мая 2019 г. поступила собака породы шиба-ишу, с новообразованием на слизистой оболочке внутренней стороны правой челюсти. Возраст животного 4 года.
Макроскопическое описание опухоли.
При клиническом осмотре, на внутренней стороне слизистой оболочке десны, с внутренней стороны правой, нижней челюсти, обнаружено опухолевидное разрастание, уплотнённой консистенции, около 3 см. в диаметре. Новообразование широким основанием фиксировано к подлежащей кости. Поверхность опухоли имела дольчатое строение, В общем, поверхность опухоли имела светло - розовый цвет. Однако в отдельных разрастаниях просматривались тёмно - коричневые участки(фото 1).
Фото 1. Общий вид удалённой опухоли. Показана дольчатая поверхность новообразования. На общем светло - розовом фоне опухоли, хорошо просматриваются тёмно - коричневые участки(стрелки).
Цитологическое исследование.
Мазки-отпечатки для цитологического исследования готовились с поверхности разреза опухоли. Мазки фиксировались в жидкости Карнуа и окрашивались анилиновыми красками.
При микроскопическом исследовании мазков-отпечатков обнаруживались группы округлых опухолевых клеток с широкой эозинофильной цитоплазмой (фото 2).
Фото 2. Цитологический препарат. Показана группа опухолевых клеток с широкой розовой цитоплазмой (стрелки).
Просматривая несколько полей зрения можно было проследить, как эти клетки превращаются в гигантские, а их ядра амитотически делятся на 6 - 10 частей (фото 3 - 4)
Фото 3. Цитологический препарат. Показаны гигантские опухолевые клетки с амитотическим делением ядер (стрелки).
Фото 4. Цитологический препарат. Показаны гигантские клетки с аметотическими ядрами(стрелки).
В цитоплазме отдельных клеток можно было видеть зёрна пигмента меланина (фото 5).
Фото 5. Цитологический препарат. Показаны зёрна меланина в цитоплазме опухолевой клетки (стрелка).
ЗАКЛЮЧЕНИЕ. На основании анамнеза, проведённого визуального и цитологического исследований, можно заключить, что новообразование, расположенное на слизистой оболочке десны собаки представляет собой ЭПУЛИС. Обнаруженное многообразие морфологических форм опухолевых клеток свидетельствует о начале эволюции эпулиса в эпидермальную карциному(рак).
Примечание. Эпулис - это доброкачественное разрастание тканей дёсен. Однако в данном случае, эпулис имеет тенденцию к инфильтрации в прилегающие ткани. Поэтому, со временем, возможно рецидивирование эпулиса в более агрессивную форму.
ЦЕНТР ОХРАНЫ ЗДОРОВЬЯ ЖИВОТНЫХ
ДОКТОРА А. М. БУГАЕВА
г. Киев, Иорданская, 6; тел. 426 – 47 – 78
ЗАКЛЮЧЕНИЕ О ПАТОГИСТОЛОГИЧЕСКОМ И ЦИТОЛОГИЧЕСКОМ ИССЛЕДОВАНИИ ОПУХОЛИ СОБАКИ ПО КЛИЧКЕ ЛИЗА.
В ветеринарную клинику Центра охраны здоровья животных доктора А. М. Бугаева 27 сентября 2019 года поступила собака по кличке Лиза, возраст 4 года, с новообразованием в области среднего пакета молочной железы, слева.
Макроскопическое описание опухоли.
При клиническом осмотре животного в области левого среднего пакета молочной железы обнаружилось новообразование, до 2 см в диаметре. Опухоль уплотнённой консистенции, имела узловатый вид. Поверхность кожи над опухолью окрашена в серый цвет. При разрезе кожи, опухоль представилась в виде ярко красного узла, без чётких границ (фото 1-2).
Фото 1. Показан общий вид опухоли до операции (чёрные стрелки). Хорошо видно, что опухоль образовалась в пакете молочной железы, рядом с соском (красная стрелка). Опухоль нечётко отграничена от окружающей ткани и растёт в виде трёх узлов.
Фото 2. Показан общий вид удалённого новообразования. Опухоль с поверхности окрашена в светло - красный цвет. На поверхности опухоли видно несколько узелков разных размеров (стрелки).
На разрезе опухоли хорошо видно, что она состоит из множества мелких, округлых узелков, имеющих разные размеры (фото 3).
Фото 3. Показан общий вид опухоли на разрезе. Поверхность разреза имеет саловидный цвет и окрашена в светло - розовый цвет. Хорошо видно, что опухоль растёт в виде чётко ограниченных узелков (стрелки).
Патогистологическое и цитологическое исследование.
При гистологическом исследовании хорошо видно, что опухоль представлена большим количеством протоков и желёз молочной железы, находящихся на разных стадиях разрушения. Между протоками молочной железы видно наличие большого количества соединительной ткани (фото 4).
Фото 4. Гистологический препарат. Показан общий вид опухоли. Хорошо видно, что опухоль представлена протоками и железами молочной железы находящихся на разных стадиях разрушения (чёрные стрелки). Красными стрелками показана соединительная ткань, в большом количестве разросшаяся между паренхимой молочной железы.
При просмотре нескольких полей зрения микроскопа, можно заметить, что соединительная ткань берёт своё начало из адвентиции протоков и кровеносных сосудов (фото 5).
Фото 5. Гистологический срез. Показан обильный рост соединительной ткани со стороны адвентиции протоков и артериол молочной железы (стрелки).
Местами в гистологических препаратах обнаруживаются участки протоковой малигнизации эпителия. В таких случаях в просветах протоков наблюдается пролиферация эпителия и его превращение в злокачественные клетки. Это особенно хорошо видно на цитологических препаратах (фото 6 -7).
Фото 6. Гистологический срез. Показаны папиллярные выросты в протоках молочной железы (чёрные стрелки). Красной стрелкой показаны протоки, просветы которых полностью заполнены опухолевыми клетками.
При большом увеличении микроскопа чётко просматривается, что малигнизация происходит в сторону фибросаркомы (фото 7).
Фото 7. Гистологический срез. Показан папиллярный вырост в протоке молочной железы. Хорошо виден выраженный полиморфизм опухолевых клеток. Однако большая часть опухолевых клеток морфологически напоминает клетки соединительной ткани (фибробласты).
Полиморфизм опухолевых клеток чётко можно видеть на цитологических препаратах (фото 8 – 9).
Фото 8. Цитологический препарат. Показан полиморфизм опухолевых клеток, находящихся в просвете протока молочной железы. Увеличение микроскопа в 400 раз.
Фото 9. Цитологический препарат. Показаны опухолевые клетки в просвете протока молочной железы. Хорошо видно, что опухолевые клетки находятся на разных стадиях амитоза (чёрные стрелки), а в их ядрах находится увеличенное количество ядрышек (красные стрелки).
ЗАКЛЮЧЕНИЕ.
Новообразование, расположенное в области левого пакета молочной железы животного, представляет собой ФИБРОАДЕНОМУ с элементами превращения её в фибросаркому.
Примечание:
ФИБРОАДЕНОМА – это доброкачественная опухоль молочной железы, берущая своё начало из адвентиции протоков и артериол молочной железы. Особенность данной опухоли состоит в том, что наряду с доброкачественным ростом опухоли, местами наблюдается превращение внутрипротоковых пролифератов в злокачественные клетки по типу фибросаркомы. Этиология таких опухолей у собак неизвестна. Они могут образовываться, как в одном пакете молочной железы, так и в железах других пакетов. После удаления опухоли молочной железы, у собак могут возникать рецидивы. Поэтому желательно для уменьшения риска рецидива, пройти курс противоопухолевой терапии разработанной в нашем Центре.
Директор Центра охраны здоровья животных,
кандидат ветеринарных наук,
цитолог - патогистолог А.М. Бугаев.
Врач-хирург ветеринарной клиники,
доктора А. М. Бугаева,
кандидат ветеринарных наук О.В. Прилипко.
ЦЕНТР ОХРАНЫ ЗДОРОВЬЯ ЖИВОТНЫХ
ДОКТОРА А. М. БУГАЕВА
г. Киев, Иорданская, 6; тел. 426 – 47 – 78
ЗАКЛЮЧЕНИЕ.
ПО ПАТОГИСТОЛОГИЧЕСКОМУ И ЦИТОЛОГИЧЕСКОМУ
ИССЛЕДОВАНИЮ ОПУХОЛИ ВОЛНИСТОГО ПОПУГАЯ.
В ветеринарную клинику Центра охраны здоровья животных, 5 января 2020 г. поступил волнистый попугайчик, возраст 2 года
(волнистые попугайчики в неволе, при хорошем содержании, уходе и кормлении, живут до 15 лет).
Хозяйка обратилась в ветеринарную клинику, по поводу появления новообразования под крылом у попугайчика.
При визуальном осмотре, на коже в области изгиба плечевой, локтевой и лучевой костей (левого локтевого сустава) обнаружено новообразование размером приблизительно 1,5 см. Опухоль имела вид узелка, с поверхности и на разрезе окрашенного в бурый цвет. На краю крыла был обнаружен кровоподтёк тёмно – красного цвета - расклёв (фото 1 ).
Фото 1. Показан общий вид кожного поражения вокруг опухоли. Стрелкой показан кровоподтёк тёмно – красного цвета (расклёв).
Всё оперение попугайчика яркое, блестящее, однако вокруг опухоли оперение отсутствует. Сохранились только несколько контурных перьев (фото 2).
Фото 2. Деталь фото 1. Хорошо видно, что опухоль представляет собой нечётко контурированный узел (чёрная стрелка). А на коже, в участке опухолевого разрастания сохранились только единичные контурные перья (красные стрелки). Зелёной стрелкой показан участок, пропитанный кровью – расклёв.
Оперативным путём опухоль была успешно удалена (фото 3).
Фото 3. Общий вид удалённой опухоли. Чётко видно, что опухолевидное разрастание не имеет чётких границ и представлено в виде просовидных узелков.
ПАТОГИСТОЛОГИЧЕСКОЕ ИССЛЕДОВАНИЕ.
Гистологически опухоль была представлена множеством капилляров, между которыми располагалась соединительная ткань (фото 4 -5).
Фото 4. Гистологический препарат. Хорошо видно, что эпидермис кожи хорошо сохранён, хотя местами и гиперплазирован (чёрные стрелки). А опухоль представлена пучками соединительной ткани (красная стрелка) и сетью кровеносных сосудов (зелёная стрелка). Ув. об.4х ок.10.
Фото 5. Гистологический срез. Показан расширенный кровеносный сосуд (чёрная стрелка), вокруг которого видна соединительная ткань, формирующая «муаровые» структуры (красные стрелки). Ув. об.10 х ок.10.
Просматривая гистологический препарат при большем увеличении микроскопа можно было проследить, что начало росту соединительной ткани даёт адвентиция кровеносных сосудов (фото 6).
Фото 6. Гистологический срез. На фото хорошо видна «муаровая» структура соединительной ткани (красная стрелка). Зелёными стрелками показана сеть мелких, резко инъецированных капилляров. Чёрной стрелкой показана прямая связь роста соединительной ткани из адвентиции крупного кровеносного сосуда. Ув.об.10 х ок.20.
Большая часть опухоли представлена хорошо сформированной соединительной тканью и дифференцированными фиброцитами. Однако, местами можно было видеть гиалинизированные волокна соединительной ткани, что свидетельствует о длительности патологического процесса (фото 7 -8).
Фото 7. Гистологический срез. Показаны хорошо сформированы волокна соединительной ткани (чёрная стрелка). Красной стрелкой показаны группы свободных фиброцитов – это молодые клетки соединительной ткани.
Фото 8. Гистологический срез. Показаны пучки гиалинизированной опухолевой соединительной ткани (стрелки).
ЦИТОЛОГИЧЕСКОЕ ИССЛЕДОВАНИЕ.
К сожалению, поставить диагноз ангиофиброма, только по данным изучения цитологических препаратов, не представилось возможным. Поскольку, из–за соединительнотканного строения опухоли и её плотности, в мазки - отпечатки попадали только фиброциты и эритроциты. Поэтому возникла необходимость провести дополнительно патогистологическое исследование. Цитологическое исследование, в таких случаях даёт лишь основание судить о злокачественности опухоли и её агрессивности, а что касается структуры опухоли и её происхождения, в таких случаях необходимо патогистологическое исследование. Что и было сделано в данном конкретном случае.
При цитологическом исследовании в препаратах – отпечатках волнистого попугайчика обнаруживалось большое количество крупных клеток, морфологически сходных с фиброцитами (фото 9).
Фото 9. Цитологический препарат. Показаны ядерные эритроциты (красные стрелки) и крупные клетки, морфологически сходные с фиброцитами
(чёрные стрелки). Ув. Об.100 х 10.
В ядрах многих фиброцитов обнаруживалось от 3 до 8 ядрышек, что свидетельствует о их активном биохимическом обмене (фото 10).
Фото 10. Цитологический препарат. Показаны крупные опухолевые клетки ( гипертрофированные фиброциты), в кариосоме которых видно множество ядрышек (чёрная стрелка). Красными стрелками показаны ядерные эритроциты.
ЗАКЛЮЧЕНИЕ:
На основании визуального, патогистологического и цитологического исследований, опухоль кожи в области локтевого сустава попугая, можно квалифицировать, как АНГИОФИБРОМУ , возникшую, по – видимому, как следствие травматизации (расклёва) кожи.
ПРИМЕЧАНИЕ:
АНГИОФИБРОМА - это доброкачественная опухоль, состоящая из разросшейся соединительной ткани и аномально расширенных кровеносных сосудов. Ангиофиброма очень редко встречается даже у людей, а что касается волнистых попугайчиков, то в доступной нам литературе, таких данных мы не нашли. Согласно сведений медицинской литературы , ангиофибромы не имеют склонности к переходу в злокачественный процесс. Однако, как показали цитологические исследования, фиброциты данной опухоли находились в активной фазе биохимического обмена. Поэтому, не исключено, что на месте удалённой опухоли, со временем может появится рецидив.
Совершенно правильно было принято решение о проведении радикальной операции. Поскольку при постоянном раздражении (травмировании), со временем, доброкачественная опухоль могла бы дать начало росту злокачественной опухоли – фибросаркоме.
ЦИТОЛОГИЧЕСКОЕ ЗАКЛЮЧЕНИЕ ПО ОПУХОЛИ ПЕТУХА.
В ветеринарную клинику Центра охраны здоровья животных 26 мата 2018 года поступил петух с новообразованием в области слухового прохода. Возраст птицы 4 месяца.
При клиническом осмотре птицы, слева в области слухового прохода обнаружено образование округлой формы, размером около 3 см. в диаметре. Опухоль имела уплотнённую консистенцию и широким основанием прикреплена к коже головы. Чёткие границы опухоли отсутствуют. Нижняя часть опухоли окрашена в ярко красный цвет (цвет гребня и серёжек петуха). Верхняя часть опухоли имела светло – розовый цвет и её поверхность была усеяна мелкими язвочками (фото 1).
Фото 1. Общий вид опухули до операции.
Новообразование хирургическим путём было удалено. Удалённая, (обескровленная опухоль) представляла собой саловидное новообразование. С поверхности опухоли видны небольшие язвочки и гематомы(фото 2).
Фото 2. Общий вид удалённой опухоли. На поверхности опухоли хорошо видны язвочки и небольшие гематомы.
Поверхность разреза опухоли имела однородную (сало видную) структуру с гематомами внутри опухоли (фото 3).
Фото 3. Показана структура опухоли на разрезе. Общая окраска поверхности имеет саловидный цвет. На этом фоне хорошо видны разных размеров и формы гематомы имеющие тёмно - красный цвет (стрелки).
ЦИТОЛОГИЧЕСКОЕ ИССЛЕДОВАНИЕ.
Мазки - отпечатки готовились с поверхности разреза опухоли. Затем, после просушки они фиксировались в жидкости Карнуа и окрашивались анилиновыми красками.
При микроскопическом исследовании мазков - отпечатков в разных участках препаратов можно было видеть группы опухолевых клеток , имеющих округлую или полигональную форму(фото 4).
Фото 4. Цитологический препарат. Показан общий вид опухоли под увеличением микроскопа в 1000 раз. Хорошо видно, что опухоль состоит из множества клеток округлой и полигональной формы имеющих разные размеры (стрелки).
У опухолевых клеток больших размеров хорошо просматривались крупные ядра и широкая эозинофильная цитоплазма (фото 5).
Фото 5. Цитологический препарат. Показана группа опухолевых клеток с широкой, эозинофильной цитоплазмой, отдалённо напоминающих эндотелиальные клетки капилляров (стрелки).
При больших увеличениях микроскопа в крупных клетках можно было видеть от 3 –х до 5 ядрышек. Обычно такие опухолевые клетки находились на разных стадиях амитоза (фото 6). Такое морфологическое состояние опухолевых клеток свидетельствует о их повышенной биохимической активности.
Фото 6. Цитологический препарат. Показаны опухолевые клетки разных размеров. В некоторых клетках больших размеров можно видеть от 3-4 до 5 ядрышек (стрелки).
ЗАКЛЮЧЕНИЕ.
На основании цитологического исследования, можно заключить, что удалённая опухоль представляет собой.
КРУГЛОКЛЕТОЧНУЮ АНГИОСАРКОМУ.
Примечание.
Круглоклеточная ангио саркома – это злокачественная опухоль, берущая своё начало из эндотелия и адвентиции кровеносных сосудов кожи. Этиология таких опухолей у птиц неизвестна. По характеру роста, опухоль, довольно злокачественная, она может давать как ближние, так и отдалённые метастазы. Поэтому, в случае обнаружения опухолевых образований на коже птицы, немедленно необходимо обратиться в ветеринарную клинику для консультации.
Ресурс для обратной связи:
Email: bugaev@ukr.net
Телефон для контакта - (044) – 426 – 47 – 76(78)
- © 2013-2020 www.vetbugaev.kiev.ua
- Все права защищены.
- Использование любых материалов, размещённых на сайте, разрешается при условии ссылки на www.vetbugaev.kiev.ua
- При копировании материалов со страницы www.vetbugaev.kiev.ua для интернет-изданий – обязательна прямая открытая для поисковых систем гиперссылка. Ссылка должна быть размещена в независимости от полного либо частичного использования материалов. Гиперссылка (для интернет- изданий) – должна быть размещена в подзаголовке или в первом абзаце материала.
1. J. P. Dubey, G. Schares and L. M. Ortega-Mora3. Epidemiology and Control of Neosporosis and Neospora caninum. CLINICAL MICROBIOLOGY REVIEWS, Apr. 2007, p. 323–367 Vol. 20, No. 2 0893-8512/07/$08.000 doi:10.1128/CMR.00031-06 Copyright © 2007, American Society for Microbiology. All Rights Reserved.
Электронный ресурс. Режим доступа http://www.uesc.br/cursos/pos_graduacao/mestrado/animal/bibliografia2011/george_artigo3_dubey.pdf.
2. Бейер Т.В., Шибалова Т.А., Костенко Л.А. Цитология Кокцидий.Ленинград,из.Наука, 1978.
3. Галузо И.Г. Жизненный цикл токсоплазм, Издательство «Наука», Казахская ССР, Алма – Ата, 1974.
\4. Шевкунова Е.А. История изучения токсоплазмоза в Советском Союзе –Хроника исследований, воспоминания, письма.Изд. «Большая Российская Энциклопедия, Москва ,2006
1. Arthur W. Ham; David H.Cormmacr – Hystology, 1983. Department of Anatomy, Division of Histology, Faculty of Medicine,University of Torontо. В пяти томах, перевод с английского канд. мед.наук В.Л. Быкова, под редакцией д-ра мед. наук Ю.И. Афанасьева и д-ра биол. наук Ю.С.Ченцова.
Работы по частным вопросам
1. Акиншина Г.Т. , Засухин Д.Н. Актуальные проблемы токсоплазмоза. – Сборник докладов на Всесоюзном симпозиуме по токсоплазмозу 14 -16 декабря 1971г. М.,1971.стр.148.
2. Бакшеев Д,И. Неоспороз - новая гинекологическая патология крупного рогатого скота.- Журнал «Зооиндустрия», 2001,№7.
http://vettorg.net/magazines/3/2001/29/77/.
3. Бугаева Л.А., Вустина У.Д.Цитохимические особенности разных стадий жизненного цикла токсоплазм.- В кн.: Жизненный цикл токсоплазм (развитие, биология, циркуляция в природе). Алма –Ата, «Наука», 1974, с.69 -79
4. Бугаев А.М., Новинская В.Ф. НЕКОТОРЫЕ - ? В сб.: Успехи протозоологии. Третий Международный Конгресс Протозоологов. Л.,1969,стр.242 -243.
5. Бугаев А.М., Вустина У.Д. - Реакция организма хозяина в связи с особенностями эндогенного цикла развития токсоплазм. В кн.: Жизненный цикл токсоплазм. Алма –Ата, «Наука», 1974, с.173 – 193.
6. Бугаев, А. М. Токсоплазмоз новый взгляд на старую проблему (биология, циркуляция в природе, отношения паразит хозяин, систематика). Часть 1. НМТ. Новые медицинские технологии. 2005. № 4. . с .42-46.
7. Бугаев, А. М. Токсоплазмоз новый взгляд на старую проблему (биология, циркуляция в природе, отношения паразит хозяин, систематика) Часть II. НМТ. Новые медицинские технологии. 2005. № 5. с. 25 -31.
8. Бугаев В.А., Бугаев, А. М. Токсоплазмоз мелких домашних животных- Мифы и факты. Электронный ресусурс. Режим доступа:
http: vetbugaev.kiev.uа Статья помещена на сайте 11 ноября 2013 года.
9. Бугаев А.М. Безноитиоз крупного рогатого скота. Раздел первый. Общие сведения о безноитиях и безноитиозе животных. Краткая историческая справка. Электронный ресурс. Режим доступа:
http: vetbugaev.kiev.uа Статья помещена на сайте 15 декабря 2013 года.
-10. Бугаев А.М. Безноитиоз крупного рогатого скота. Раздел второй.- Паразитические простейшие морфологически и эволюционно сходные с Besnoitia besnoiti. Электронный ресурс. Режим доступа:
http: vetbugaev.kiev.uа Статья помещена на сайте 15 декабря 2013 года. Обновлена 26.03.2014года.
11. Бугаев В.А., Бугаев, А. М. Токсоплазмоз. Раздел первый. - Актуальность проблемы, терминология, патоморфологическая характеристика первичного очага и токсоплазмозного сепсиса при экспериментальном заражении животных. Электронный ресурс. Режим доступа: http: vetbugaev.kiev.uа
Статья помещена на сайте 25 ноября 2014 года.
12.Бугаев В.А., Бугаев, А. М. Токсоплазмоз. Раздел второй. ПАТОМОРФОЛОГИЧЕСКАЯ ХАРАКТЕРИСТИКА ПЕРВИЧНОГО ОЧАГА ПРИ ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНОМ ЗАРАЖЕНИИ ЖИВОТНЫХ. Электронный ресурс.Режим доступа: http: vetbugaev.kiev.uа Статья помещена на сайте 25 ноября 2014 года.
13.Бугаев В.А., Бугаев, А. М , Араш(Али) Шахабпур. Неоспороз. Сравнительный анализ жизненного цикла неоспор и представителей подкласса Haemosporinа
Электронный ресурс. Режим доступа: http: vetbugaev.kiev.uа
Статья помещена на сайте Х месяца 2015 года.
14. Всеволодов Б.П. О безноитиозе крупного рогатого скота в Казахстане. Труды четвёртой конференции по природной очаговости болезней и вопросам паразитологии Казахстана и республик Средней Азии. 15 – 20 сентября, 1959.Издательство Академии наук Казахской ССР, Алма –Ата, 1961. Вып.3. стр. 196 - 206.
15. Ветеринарный энциклопедический словарь Электронный ресурс. Режим доступа http://veterinary.academic.ru/.
16. Галузо И.Г. Новое о токсоплазмах и их циркуляции в природе. – Тез.докл.Первого Всесоюзного общества протозоологов. Баку, 1971, стр.25 – 27.
17.Галузо И.Г. Новые данные в изучении жизненного цикла токсоплазм и использование их в практике. В кн.: Диагностика токсоплазмоза животных. Алма –Ата, 1971,с.122 – 136.
18.Галузо И.Г., Коновалова С.И. Бугаев А.М. Жизненный цикл токсоплазм и их циркуляция в природе. В сб.: Вопросы природной очаговости болезней. Вып.5 Алма –ата. 1972.стр. 64 -99.
19. Галузо И.Г., Бугаев А.М. О жизненном цикле Toxoplasma gondii и положении вида в системе. В кн.: Материалы Первого съезда Всесоюзного общества протозоологов. Баку,1971, стр.201 – 203.
20. Галузо И.Г., Бугаев А.М., Коновалова С.И., Вустина У.Д. Жизненный цикл токсоплазм. В кн.: Жизненный цикл токсоплазм, Алма –Ата, «Наука»,1974, стр.15 – 43.
21.Засухин Д.Н. Некоторые нерешённые вопросы проблемы токсоплазмоза. В кн.: Проблемы токсоплазмоза животных. Алма –Ата,1966, стр.9 -11.
22.Чернышова О.А.Неоспороз крупного рогатого скота Эпизоотология, диагностика. Автореферат кандидатской диссертации, 2000 год. Электронный ресурс. Режим доступа:
23..Шустров А.К., Хавкин Т.Н. Святухина О.А. Развитие Toxoplasma gondii и связанные с этим реактивные процессы в брюшине белых мышей. – Паразитология, 1968,т.2.№1, стр.83 – 90.
24. Якимов В.Л. Паразиты неопределённой природы. В кн.: Болезни домашних животных вызываемые простейшими. Сельколхозгиз, Москва,1931г. стр.367 -371
25. Anderson, M. L., C. W. Palmer, M. C. Thurmond, J. P. Picanso, P. C. Blanchard, R. E. Breitmeyer, A. W. Layton, M. McAllister, B. Daft, H. Kinde, D. H. Read, J. P. Dubey, P. A. Conrad, and B. C. Barr. 1995. Evaluation of abortions in cattle attributable to neosporosis in selected dairy herds in California. J. Am. Vet. Med. Assoc. 207:1206-1210.
26. Anderson, M. L., J. P. Reynolds, J. D. Rowe, K. W. Sverlow, A. E. Packham, B. C. Barr, and P. A. Conrad. 1997. Evidence of vertical transmission of Neospora sp. infection in dairy cattle. J. Am. Vet. Med. Assoc. 210:1169-1172.
27. Anderson, M. L., A. G. Andrianarivo, and P. A. Conrad. 2000. Neosporosis in cattle. Anim. Reprod. Sci. 60-61:417-431.
28. Anderson, М. L, A. Dejardin, D. K. Howe, J. P. Dubey, and M. L. Michalski. 2007.Neospora caninum antibodies detected in midwestern white-tailed deer (Odocoileus virginianus) by Western blot and ELISA. Vet. Parasitol. 145:152-155.
28. Andreotti, R., R. D. Pinckney, P. P. Pires, and E. A. E. Silva. 2004. Evidence ofNeospora caninum in beef cattle and dogs in the state of Mato Grosso do Sul, center-western region, Brazil. Rev. Bras. Parasitol. Vet. 13:129-131.
29. Andreotti, R., J. M. Oliveira, E. Araujo e Silva, L. M. Oshiro, and M. F. C. Matos. 2006. Occurrence of Neospora caninum in dogs and its correlation with visceral leishmaniasis in the urban area of Campo Grande, Mato Grosso do Sul, Brazil. Vet. Parasitol. 135:375-379.
30. Ashlie Hartigana, Bing Y. Zhua, Damien P. Higginsa, Paul J. Canfielda, Jan Šlapetaa.J. Veterinary Parasitology Volume 159, Issue 2, 5 February 2009, Pages 105–111/
31. Alexandre Dias Munhoz1, Tiago Wilson Patriarca Mineo, Antonio Carlos Alessi3, Carlos Wilson Gomes Lopes, Rosangela Zacarias Machado - Avaliação da infecção experimental de cães com membranas córion-alantóides de Gallus gallusinoculadas com Neospora caninum.
32. Atkinson, R., P. A. W. Harper, C. Ryce, D. A. Morrison, and J. T. Ellis. 1999. Comparison of the biological characteristics of two isolates of Neospora caninum.Parasitology 118:363-370.
33. Bandini LA, Alves AF N°, Pena HF, Cavalcante GT, Schares G, Nishi SM, et al. Experimental infection of dogs (Canis familiaris) with sporulated oocysts of Neospora caninum. Vet Parasitol 2011; 176(2-3): 151-156. PMid:21094584. Электронный ресурс. Режим доступа: http://dx.doi.org/10.1016/j.vetpar.2010.10.047 [ Links ]
34. Barr, B. C., P. A. Conrad, K. W. Sverlow, A. F. Tarantal, and A. G. Hendrickx.1994. Experimental fetal and transplacental Neospora infection in the nonhuman primate.Lab. Investig. 71:236-242.
35. Bergeron, N., G. Fecteau, J. Paré, R. Martineau, and A. Villeneuve. 2000. Vertical and horizontal transmission of Neospora caninum in dairy herds in Québec. Can. Vet. J.41:464-467.
36. Boulton, J. G., P. A. Gill, R. W. Cook, G. C. Fraser, P. A. W. Harper, and J. P. Dubey. 1995. Bovine Neospora abortion in north-eastern New South Wales. Aust. Vet. J.72:119-120.
37. Bjerkas I, Mohn SF, Presthus J. Unidentified cyst-forming sporozoon causing encephalomyelitis and myositis in dogs. Z Parasitenkd 1984; 70(2): 271-274. PMid:6426185. Электронный ресурс. Режим доступа:
http://dx.doi.org/10.1007/BF00942230 [ Links ]
38. Cavalcante G.T, Monteiro R.M, Soares R.M, Nishi S.M, Alves A.F , Esmerini P.O, et al. Shedding of Neospora caninum oocysts by dogs fed different tissues from naturally infected cattle. Vet Parasitol 2011; 179(1-3): 220-223. PMid:21450407 Электронный ресурс. Режим доступа: . http://dx.doi.org/10.1016/j.vetpar.2011.02.026. 39. Cedillo CJR, Martínez MJJ, Santacruz AM, Banda RVM, Morales SE. Models for experimental infection of dogs fed with tissue from fetuses and neonatal cattle naturally infected with Neospora caninum. Vet Parasitol 2008; 154(1-2): 151-155. PMid:18395346 Электронный ресурс. Режим доступа:. http://dx.doi.org/10.1016/j.vetpar.2008.02.025
40. De Marez T, Liddell S, Dubey JP, Jenkins MC, Gasbarre L. Oral infection of calves with Neospora caninum oocysts from dogs: humoral and cellular immune responses. Int J Parasitol 1999; 29(10): 1647-1657. Электронный ресурс. Режим доступа: http://dx.doi.org/10.1016/S0020-7519(99)00154-X
41. Dijkstra T, Eysker M, Schares G, Conraths FJ, Wouda W, Barkema HW. Dogs shed Neospora caninum oocysts after ingestion of naturally infected bovine placenta but not after ingestion of colostrum spiked with Neospora caninum tachyzoites. Int J Parasitol 2001; 31(8): 747-752. Электронный ресурс. Режим доступа:
http://dx.doi.org/10.1016/S0020-7519(01)00230-2[ Links ]
42. Dubey, J. P., E. Knickman, and C. E. Greene. 2005. Neonatal Neospora caninum infections in dogs. Acta Parasitol. 50:176-179.
43. Dubey J.P, Schares G. Neosporosis in animals - The last five years. Vet Parasitol 2011; 180(1-2) 90-108. PMid:21704458. Электронный ресурс. Режим доступа: http://dx.doi.org/10.1016/j.vetpar.2011.05.031
44.Dubey J.P, Carpenter JL, Speer CA, Topper MJ, Uggla A. Newly recognized fatal protozoan disease of dogs. J Am Vet Med Assoc 1988; 192(9): 1269-1285. PMid:3391851.
45.Dubey J.P, Lindsay DS, Speer CA. Structures of Toxoplasma gondii tachyzoites, bradyzoites, and sporozoites and biology of tissue cysts. Clin Microbiol Rev 1998; 11(2): 267-299. PMid:9564564 PMCid:PMC106833.
46. Dubey J.P. and J.k.Frenkel J. K. Cyst – induced toxoplasmosis in cats.- J.Protozool.,1972, v. 19, p.155 -177
47. DUBEY, J. P., HATTEL A.L., LINDSAY D.S., TOPPER M. S., -1988. Neonatal Neospora caninum infection in dogs; Isolation of the causative organism and experimental transmission. J. Am Vet. Med. Assoc. 1988,193: 1259-1263.
48. Fioretti, D. P., P. Pasquai, M. Diaferia, V. Mangili, and L. Rosignoli. 2003.Neospora caninum infection and congenital transmission: serological and parasitological study of cows up to the fourth gestation. J. Vet. Med. B 50:399-404.
49. Frössling, J., A. Uggla, and C. Björkman. 2005. Prevalence and transmission ofNeospora caninum within infected Swedish dairy herds. Vet. Parasitol. 128:209-218.
50. Furuta P.I, Mineo TWP, Carrasco AOT, Godoy GS, Pinto AA, Machado RZ. Neospora caninum infection in birds: experimental infections in chicken and embryonated eggs. Parasitology 2007; 134(pt.14): 1931-1939. PMid:17686190.
51. Furuta P.I. Infecção experimental em cães com ovos embrionados de galinha (Gallus gallus domesticus) infectados com taquizoítas de Neospora caninum. [Tese]. Jaboticabal: Universidade Estadual Paulista, Faculdade de Ciências Agrárias e Veterinárias; 2008.
52. Gondim LFP, Gao L, McAllister MM. Improved production of Neospora caninum oocysts, cyclical oral transmission between dogs and cattle, and in vitro isolation from oocysts. J Parasitol 2002; 88(6): 1159-1163. PMid:12537111.
53. Hall, C. A., M. P. Reichel, and J. T. Ellis. 2005. Neospora abortions in dairy cattle: diagnosis, mode of transmission and control. Vet. Parasitol. 128:231-241.
54. Hosseininejad, M. Sero-prevalence of Neospora caninum and Toxoplasma infections in dogs from the west and central parts of Iran with two Indirect ELISA and assessment of associated risk factors. Journal of Veterinary Research, Shiraz University, Vol. 12, № 1, Ser. Number 34, 2011
55.Hosseininejad,M and Hoseini,F. Sero-prevalence of Neospora caninum and Toxoplasma infections in dogs from the west and central parts of Iran with two Indirect ELISA and assessment of associated risk factors. Journal of Veterinary Research, Shiraz University, Vol. 12, № 1, Ser. Number 34, 2011
56. Gondim L.F.P, McAllister M.M, Gao L. Effects of host maturity and prior exposure history on the production of Neospora caninum oocysts by dogs. Vet Parasitol 2005; 134(1-2): 33-39. PMid:16029931. Электронный ресурс. Режим доступа:http://dx.doi.org/10.1016/j.vetpar.2005.06.011
57.Jennifer Tranas,1 Robert A. Heinzen,2,* Louis M. Weiss,3 and Milton M. McAllister1,† Serological Evidence of Human Infection with the Protozoan Neospora caninumJournal ListClin Diagn Lab Immunolv.6(5); 1999 SepPMC95770
58. McInnes, L. M., P. Irwin, D. G. Palmer, and U. M. Ryan. 2006. In vitro isolation and characterization of the first canine Neospora caninum isolate in Australia. Vet. Parasitol. 137:355-363.
59.Munhoz AD, Jacintho APP, Machado RZ. Bovine abortion associated with Neospora caninum: Diagnosis and epidemiological aspects of a dairy cattle herd in the Northeast region of São Paulo State, Brazil. Braz J Vet Pathol 2011; 4(2): 112-116.
60. Luca Motta. Neurological neosporosis in dog. Veterinary Times n 33 of 20/08/2012.
62. Rodrigues AA, Gennari SM, Aguilar DM, Sreekumar C, Hill DE, Miska KB, et al. Shedding of Neospora caninum oocysts by dogs fed tissues from naturally infected water buffaloes (Bubalus bubalis) from Brazil. Vet Parasitol 2004; 124(3-4): 139-150. PMid:15381294. Электронный ресурс. Режим доступа: http://dx.doi.org/10.1016/j.vetpar.2004.07.007
63.Schares, G., N. Pantchev, D. Barutzki, A. O. Heydorn, C. Bauer, and F. J. Conraths. 2005. Oocysts of Neospora caninum, Hammondia heydorni, Toxoplasma gondii and Hammondida hammondi in faeces collected from dogs in Germany. Int. J. Parasitol. 35:1525-1537.
64. Schares, G., M. Peters, R. Wurm, A. Bärwald, and F. J. Conraths. 1998. The efficiency of vertical transmission of Neospora caninum in dairy cattle analyzed by serological techniques. Vet. Parasitol. 80:87-98.
65. Sicupira PM, De Magalhães VCS, Galvão GS, Pereira JMS, Gondim LFP, Munhoz AD. Factors associated with infection by Neospora caninum in dogs in Brazil. Vet Parasitol 2012; 185(2-4): 305-308. PMid:22015062. Электронный ресурс. Режим доступа:http://dx.doi.org/10.1016/j.vetpar.2011.09.029
66. Schares, G., N. Pantchev, D. Barutzki, A. O. Heydorn, C. Bauer, and F. J. Conraths. 2005. Oocysts of Neospora caninum, Hammondia heydorni, Toxoplasma gondii and Hammondida hammondi in faeces collected from dogs in Germany. Int. J. Parasitol. 35:1525-1537.
66. Tranas, J., R. A. Heinzen, L. M. Weiss, and M. M. McAllister. 1999. Serological evidence of human infection with the protozoan Neospora caninum. Clin. Diagn. Lab. Immunol. 6:765-767.
67. Yamane I, Kokuho T, Shimura K, Eto M, Shibahara T, Haritani M, et al. In vitro isolation and characterisation of a bovine Neospora species in Japan. Res Vet Sci 1997; 63(1): 77-80. Электронный ресурс. Режим доступа:http://dx.doi.org/10.1016/S0034-5288(97)90162-4
68. Yamage M, Flechtner O, Gottstein B. Neospora caninum: specific oligonucleotide primers for the detection of brain "cyst" DNA of experimentally infected nude mice by the polymerase chain reaction (PCR). J Parasitol 1996; 82(2): 272-279. PMid:8604096. Электронный ресурс. Режим доступа: http://dx.doi.org/10.2307/3284160
Ресурс для обратной связи: Bugaev@ukr.net